麻疹减毒活疫苗 - undefined - 《药典三部 - 中国药典2020年版》在线查询

　　本品系用麻疹病毒减毒株接种原代鸡胚细胞，经培养、收获病毒液后，加入适宜稳定剂冻干制成。用于预防麻疹。

　　1 基本要求

　　生产和检定用设施、原材料及辅料、水、器具、动物等应符合“凡例”的有关要求。

　　2 制造

　　2.1 生产用细胞

　　毒种制备及疫苗生产用细胞为原代鸡胚细胞。

　　2.1.1 细胞管理及检定

　　应符合“生物制品生产检定用动物细胞基质制备及质量控制”规定。

　　2.1.2 细胞制备

　　选用9～11日龄鸡胚，经胰蛋白酶消化、分散细胞，用适宜的培养液进行培养。来源于同一批鸡胚、同一容器内消化制备的鸡胚细胞为一个细胞消化批；源自同一批鸡胚、于同一天制备的多个细胞消化批为一个细胞批。

　　2.2 毒种

　　2.2.1 名称及来源

　　生产用毒种为麻疹病毒沪-191株、长-47株或经批准的其他麻疹病毒减毒株。

　　2.2.2 种子批的建立

　　应符合“生物制品生产检定用菌毒种管理及质量控制”规定。

　　沪-191主种子批应不超过第28代，工作种子批应不超过第32代；长-47主种子批应不超过第34代，工作种子批应不超过第40代。采用沪-191生产的疫苗应不超过第33代，采用长-47生产的疫苗应不超过第41代。

　　2.2.3 种子批毒种的检定

　　主种子批应进行以下全面检定，工作种子批应至少进行2.2.3.1～2.2.3.5项检定。

　　2.2.3.1 鉴别试验

　　将稀释至500～2000 CCID50/ml的病毒液与适当稀释的麻疹病毒特异性免疫血清等量混合后，置37℃水浴60分钟，接种Vero细胞或FL细胞，在适宜的温度下培养7～8天判定结果。麻疹病毒应被完全中和（无细胞病变）；同时设血清和细胞对照，均应为阴性；病毒对照的病毒滴度应不低于500 CCID50/ml。

　　2.2.3.2 病毒滴定

　　将毒种做10倍系列稀释，每稀释度病毒液接种Vero细胞或FL细胞，置适宜温度下培养7～8天判定结果。病毒滴度应不低于4.5 lg CCID50/ml。应同时进行病毒参考品滴定。

　　2.2.3.3 无菌检查

　　依法检查（通则1101）（

（通则1101）），应符合规定。

　　2.2.3.4 分枝杆菌检查

　　以草分枝杆菌（CMCC 95024）或牛分枝杆菌菌株BCG作为阳性对照菌。取阳性对照菌接种于罗氏固体培养基，于37℃培养3～5天收集培养物，以0.85%～0.90%氯化钠溶液制成菌悬液，采用细菌浊度法确定菌含量，该菌液浊度与中国细菌浊度标准一致时活菌量约为2×107CFU/ml。稀释菌悬液，取不高于100CFU的菌液作为阳性对照。

　　供试品小于1ml时采用直接接种法，将供试品全部接种于适宜固体培养基（如罗氏培养基或Middlebrook 7H10培养基），每种培养基做3个重复；并同时设置阳性对照。将接种后的培养基置于37℃培养56天，阳性对照应有菌生长，接种供试品的培养基未见分枝杆菌生长，则判为合格。

　　供试品大于1ml时采用薄膜过滤法集菌后接种培养基。将供试品以0.22μm滤膜过滤后，取滤膜接种于适宜固体培养基，同时设阳性对照。所用培养基、培养时间及结果判定同上。

　　2.2.3.5 支原体检查

　　依法检查（通则3301）（

（通则3301）），应符合规定。

　　2.2.3.6 外源病毒因子检查

　　依法检查（通则3302）（

（通则3302）），应符合规定。

　　2.2.3.7 免疫原性检查

　　建立或变更主种子批时应确认主种子批的免疫原性，必要时应根据药品注册管理的相关要求开展相应的临床试验。

　　2.2.3.8 猴体神经毒力试验

　　主种子批或工作种子批的毒种应进行猴体神经毒力试验，以证明无神经毒力。每次至少用10只麻疹抗体阴性的易感猴，每侧丘脑注射0.5ml（应不低于1个人用剂量的病毒量），观察17～21天，不应有麻痹及其他神经症状出现。注射后48小时内猴死亡数不超过2只可以更换；如死亡超过20%，即使为非特异性死亡，试验也不能成立，应重试。观察期末，每只猴采血测麻疹病毒抗体，阳转率应不低于80%，并处死解剖，对大脑和脊髓的适当部位做病理组织学检查，应为阴性。每次试验同时有4只易感猴作为对照，待试验猴处死后10天，第2次采血，对照猴麻疹抗体应仍为阴性。

　　2.2.4 毒种保存

　　冻干毒种应于－20℃以下保存；液体毒种应于－60℃以下保存。

　　2.3 原液

　　2.3.1 细胞制备

　　按2.1.2项进行。

　　2.3.2 培养液

　　采用适宜的培养液进行培养。如培养液含新生牛血清，其质量应符合要求（通则3604）（

（通则3604））。

　　2.3.3 对照细胞外源病毒因子检查

　　依法检查（通则3302）（

（通则3302）），应符合规定。

　　2.3.4 病毒接种和培养

　　毒种和细胞混合后，置适宜温度下进行培养，病毒接种量及培养条件按批准的执行。当细胞出现一定程度病变时，倾去培养液，用不少于原培养液量的洗液洗涤细胞表面，并换以维持液继续培养。

　　2.3.5 病毒收获

　　观察细胞病变达到适宜程度时，收获病毒液。根据细胞生长情况，可换以维持液继续培养，进行多次病毒收获。检定合格的同一细胞批生产的同一次病毒收获液可合并为单次病毒收获液。

　　2.3.6 单次病毒收获液保存

　　按批准的执行。

　　2.3.7 单次病毒收获液合并

　　检定合格的同一细胞批生产的多个单次病毒收获液可合并为一批原液。

　　2.3.8 原液检定

　　按3.2项进行。

　　2.3.9 原液保存

　　按批准的执行。

　　2.4 半成品

　　2.4.1 配制

　　将原液按规定的同一病毒滴度进行配制，加入适宜稳定剂，即为半成品。多批检定合格的原液可制备成一批半成品。

　　2.4.2 半成品检定

　　按3.3项进行。

　　2.5 成品

　　2.5.1 分批

　　应符合“生物制品分包装及贮运管理”规定。

　　2.5.2 分装及冻干

　　应符合“生物制品分包装及贮运管理”规定。

　　2.5.3 规格

　　按标示量复溶后每瓶0.5ml、1.0ml或2.0ml。每1次人用剂量为0.5ml，含麻疹活病毒应不低于3.0 lg CCID50。

　　2.5.4 包装

　　应符合“生物制品分包装及贮运管理”规定。

　　3 检定

　　3.1单次病毒收获液检定

　　3.1.1 病毒滴定

　　按2.2.3.2项进行。病毒滴度应不低于4.5 lg CCID50/ml。

　　3.1.2 无菌检查

　　依法检查（通则1101）（

（通则1101）），应符合规定。

　　3.1.3 支原体检查

　　依法检查（通则3301）（

（通则3301）），应符合规定。

　　3.2 原液检定

　　3.2.1 病毒滴定

　　按2.2.3.2项进行。病毒滴度应不低于4.5 lg CCID50/ml。

　　3.2.2 无菌检查

　　依法检查（通则1101）（

（通则1101）），应符合规定。

　　3.2.3 支原体检查

　　依法检查（通则3301）（

（通则3301）），应符合规定。

　　3.3 半成品检定

　　无菌检查

　　依法检查（通则1101）（

（通则1101）），应符合规定。

　　3.4 成品检定

　　除水分测定外，应按标示量加入所附灭菌注射用水，复溶后进行以下各项检定。

　　3.4.1 鉴别试验

　　按2.2.3.1项进行。

　　3.4.2 外观

　　应为乳酪色疏松体，复溶后应为橘红色或淡粉红色澄明液体，无异物。

　　3.4.3 水分

　　应不高于3.0%（通则0832）（

（通则0832））。

　　3.4.4 pH值

　　依法检查（通则0631）（

（通则0631）），应符合批准的要求。

　　3.4.5 渗透压摩尔浓度

　　依法检查（通则0632）（

（通则0632）），应符合批准的要求。

　　3.4.6 病毒滴定

　　取疫苗3～5瓶混合滴定，按2.2.3.2项进行，病毒滴度应不低于3.3 lg CCID50/ml。

　　3.4.7 热稳定性试验

　　应由生产单位在成品入库前取样测定，应与病毒滴定同时进行。于37℃放置7天后，按2.2.3.2项进行，病毒滴度应不低于3.3 lg CCID50/ml，病毒滴度下降应不高于1.0 lg。

　　3.4.8 牛血清白蛋白残留量

　　应不高于50ng/剂（通则3411）（

（通则3411））。

　　3.4.9 抗生素残留量

　　生产过程中加入抗生素的应进行该项检查。采用酶联免疫吸附法（通则3429）（

（通则3429）），应不高于50ng/剂。

　　3.4.10 无菌检查

　　依法检查（通则1101）（

（通则1101）），应符合规定。

　　3.4.11 异常毒性检查

　　3.4.12 细菌内毒素检查

　　应不高于50EU/剂（通则1143凝胶限度试验（

通则1143凝胶限度试验））。

　　4 疫苗稀释剂

　　疫苗稀释剂为灭菌注射用水，稀释剂的生产应符合批准的要求。灭菌注射用水应符合本版药典（二部）的相关规定。

　　5 保存、运输及有效期

　　于2～8℃避光保存和运输。自生产之日起，有效期为18个月。

　　6 使用说明

　　应符合“生物制品分包装及贮运管理”规定和批准的内容。